Skip to main page content
U.S. flag

An official website of the United States government

Dot gov

The .gov means it’s official.
Federal government websites often end in .gov or .mil. Before sharing sensitive information, make sure you’re on a federal government site.

Https

The site is secure.
The https:// ensures that you are connecting to the official website and that any information you provide is encrypted and transmitted securely.

Access keys NCBI Homepage MyNCBI Homepage Main Content Main Navigation
Review
. 2020 Dec;204(9):961-970.
doi: 10.1016/j.banm.2020.09.040. Epub 2020 Sep 28.

[Novel platelet pharming using human induced pluripotent stem cells]

[Article in French]
Affiliations
Review

[Novel platelet pharming using human induced pluripotent stem cells]

[Article in French]
C Flahou et al. Bull Acad Natl Med. 2020 Dec.

Abstract

Ex vivo production of human platelets have been pursued as an alternative measure to resolve limitations in the supply and safety of current platelet transfusion products. To this end, induced pluripotent stem cells (iPSCs) are considered an ideal global source, since they are not only pluripotent and self-renewing, but also are available from basically any person, have relatively few ethical issues, and are easy to manipulate. From human iPSCs, megakaryocyte (MK) lines with robust proliferation capacity have been established by the introduction of specified sets of genes. These expandable MKs are also cryopreservable and thus would be suitable as master cells for good manufacturing practice (GMP) grade production of platelets, assuring availability on demand and safety against blood-borne infections. Meanwhile, developments in bioreactors that physically mimic the in vivo environment and discovery of substances that promote thrombopoiesis have yielded competent platelets with improved efficiency. The derivation of platelets from iPSCs could further resolve transfusion-related alloimmune complications through the manufacturing of autologous products and human leukocyte antigen (HLA)-compatible platelets by manipulation of HLAs and human platelet antigens (HPAs). Considering these key advances in the field, HLA-deleted platelets could become a universal product that is manufactured at industrial level to safely fulfill almost all demands. In this review, we overview the ex vivo production of iPSC-derived platelets towards clinical applications, a production that would revolutionize the blood transfusion system.

La production in vitro de plaquettes offre une opportunité de résoudre les problèmes liés aux limitations d’approvisionnement et à la sécurité des dons de produits dérivés du sang. Les cellules souches pluripotentes induites – ou iPSC – sont une source idéale pour la production de cellules à des fins de thérapies régénératives. Nous avons précédemment établi avec succès une lignée mégacaryocytaire immortalisée à partir d’iPSC. Celle-ci possède une capacité de prolifération fiable. Par ailleurs, il est possible de les cryoconserver. Elle est donc une source adaptée de cellules primaires pour la production de plaquettes suivant les Bonnes Pratiques de Fabrication (BPF). Dans le même temps, la capacité améliorée des bioréacteurs à reproduire certaines conditions physiologiques, telle que la turbulence, de pair avec la découverte de molécules favorisant la thrombopoïèse, a contribué à l’accomplissement de la production de plaquettes en quantité et qualité suffisantes pour répondre aux besoins cliniques. La production de plaquettes à partir de cellules iPS s’étend aussi aux patients en état de réfraction allo-immune, par la production de plaquettes autologues ou dont on a génétiquement manipulé l’expression des Antigènes des Leucocytes Humains (HLA) et des Antigènes Plaquettaires Humain (HPA). Considérant ces avancées fondamentales, les plaquettes iPSC avec expression des HLA modifiées se présentent comme un potentiel produit de transfusion universel. Dans cette revue, nous souhaitons apporter une vue d’ensemble de la production in vitro de plaquettes à partir de cellules iPS, et de son possible potentiel transformatif, d’importance capitale dans le domaine de la transfusion des produits sanguins.

Keywords: Bioreactors; Induced pluripotent stem cells; Megakaryocyte; Platelet transfusion.

PubMed Disclaimer

Figures

Figure 1
Figure 1
Modèle révisé de la mégacaryopoïèse. Précédemment, il était admis que les cellules souches hématopoïétiques (CSH) génèrent qu’un progéniteur commun des mégacaryocytes et érythrocytes (MEP). Cependant, lors de l’hématopoïèse chez l’adulte, des progéniteurs de mégacaryocytes ayant la capacité de s’auto-renouveler (les MkP) émergent directement des CSH ou de progéniteurs multipotents (MPP) et deviennent les progéniteurs majeurs des MK. Après leur différenciation et maturation, les MK migrent dans la niche vasculaire où ils produisent des plaquettes.
Figure 2
Figure 2
Lignée mégacaryocytaire immortelle et production de plaquettes ex vivo selon les BPF. Lignée mégacaryocytaire amplifiable, établie à partir d’iPS par transduction de gènes particuliers. Ces cellules peuvent être préservées et servir de cellules primaires qu’il est facile de mettre en culture, d’amplifier puis d’en induire la maturation pour produire des plaquettes sur demande.
Figure 3
Figure 3
Modèle des deux modes de thrombopoïèse. En état d’équilibre, l’effet de la TPO sur les MK de la moelle osseuse les induit à produire des pro-plaquettes dans la circulation. Dans le cas où une production importante de plaquette est nécessaire, IL-1α augmente la quantité de β1-tubuline, ce qui résulte en désorganisation des microtubules de telle sorte que les plaquettes soient libérées suivant un mode de rupture.

Similar articles

References

    1. Deutsch V.R., Tomer A. Megakaryocyte development and platelet production. Br J Haematol. 2006;134:453–466. doi: 10.1111/j.1365-2141.2006.06215.x. - DOI - PubMed
    1. Estcourt L.J., Birchall J., Allard S., Bassey S.J., Hersey P., Kerr J.P., et al. Guidelines for the use of platelet transfusions. Br J Haematol. 2017;176:365–394. - PubMed
    1. Szczepiorkowski Z.M., Dunbar N.M. Transfusion guidelines: when to transfuse. Hematol Am Soc Hematol Educ Program. 2013;2013:638–644. doi: 10.1182/asheducation-2013.1.638. - DOI - PubMed
    1. Sapiano M.R.P., Jones J.M., Savinkina A.A., Haass K.A., Berger J.J., Basavaraju S.V. Supplemental findings of the 2017 National Blood Collection and Utilization Survey. Transfusion (Paris) 2020;60(Suppl 2):S17–S37. doi: 10.1111/trf.15715. - DOI - PMC - PubMed
    1. Williamson L.M., Devine D.V. Challenges in the management of the blood supply. Lancet. 2013;381:1866–1875. - PubMed